CircRNF13在鼻咽*臨床樣本中低表達(dá)
作者對NPC細(xì)胞進(jìn)行高通量測序獲得cicRNA表達(dá)譜,總計鑒定到6153個circRNAs,并包括了5種類型的circRNA。其中豐度較高的circRNF13相對于非**的鼻炎上皮細(xì)胞(NPE),在NPC中***下調(diào)。circRNF13是有外顯子8和外顯子2反向剪切形成,在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中均有分布,并且可在RNaseR處理下穩(wěn)定存在。以上結(jié)果表明circRNF13可能影響NPC的進(jìn)展。
CircRNF13抑制NPC細(xì)胞的增殖遷移和侵襲
在NPC細(xì)胞系HNE2和CNE2中,過表達(dá)circRNF13都會***抑制NPC細(xì)胞的增殖,減少G2/M的細(xì)胞比例,以及侵襲和遷移。但是干擾circRNF13的表達(dá)則有完全相反的結(jié)果。提示circRNF13抑制NPC的生物學(xué)功能。 增加乳酸桿菌水平導(dǎo)致尿酸水平下降。Notch信號靶標(biāo)科研地區(qū)科學(xué)基金
在MKN45和BGC823細(xì)胞中,IRES突變時MAPK1-109aa不翻譯。因此,MAPK1與MEK1的結(jié)合沒有明顯變化。然而,過表達(dá)circMAPK1后,MAPK1與MEK1的結(jié)合***減少,而MAPK1-109aa與MEK1的結(jié)合***增加(圖7g)。因此,以上結(jié)果表明MAPK1-109aa與MAPK1競爭結(jié)合MEK1。隨后的Western blot結(jié)果也證實,在過表達(dá)circMAPK1的細(xì)胞系中,MAPK1-109aa***升高,磷酸化的MAPK1/2降低,而在circMAPK1敲低的細(xì)胞中則相反(圖7h)。此外,MAPK1的下游效應(yīng)因子,如p-ELK1、p-c-Fos、p-c-JUN和p-RSK,也被過表達(dá)的circMAPK1***抑制(圖7i)。這些結(jié)果表明,circMAPK1編碼的MAPK1-109aa通過抑制MAPK1信號通路發(fā)揮抑*作用。天津胃腸道科研大黃酸導(dǎo)致嘌呤代謝正?;湍c道尿酸水平的降低。
為了證明ELNAT1與BCa分泌的EV的關(guān)系,作者從BCa細(xì)胞培養(yǎng)基中分離出EVs,采用透射電子顯微鏡(TEM)、納米粒子**分析(NTA)及對EVs的蛋白標(biāo)志物檢測,證明了作者準(zhǔn)確分離出BCa分泌的EV(Figure 2 J-L)。并且從BCa患者和健康志愿者尿液樣本中分離的EVs中檢測ELNAT1的表達(dá),發(fā)現(xiàn)ELNAT1在BCa分泌的EV中過表達(dá)(Figure 2 I)。以上數(shù)據(jù)表明,EVs介導(dǎo)的ELNAT1過表達(dá)與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關(guān)。
3.EVs介導(dǎo)的ELNAT1促進(jìn)BCa體內(nèi)外淋巴管生成和淋巴轉(zhuǎn)移
為了確定EV介導(dǎo)的ELNAT1是否促進(jìn)體外淋巴管生成,作者用HLECs孵育BCa細(xì)胞分泌的EVs的檢測管形成和遷移。研究發(fā)現(xiàn),干擾ELNAT1基因會破壞UM-UC-3和T24細(xì)胞分泌EVs誘導(dǎo)HLECs管形成和遷移的能力(Figure3A-C),這些結(jié)果表明EVs介導(dǎo)的ELNAT1誘導(dǎo)了體外淋巴管生成。
再次從老年和年輕小鼠中分離BMSCs,Dil染色劑標(biāo)記后體外增殖,脛骨內(nèi)注射到另一批年輕小鼠中,三天后收獲脛骨對成骨標(biāo)志物Runx2進(jìn)行熒光免疫染色。發(fā)現(xiàn)老年BMSCs處理的小鼠中Dil標(biāo)記細(xì)胞降低,表明老化過程中OPCs向骨形成表面的遷移能力降低。大部分遷移到骨形成表面的Dil標(biāo)記細(xì)胞表達(dá)Runx2,表明OPCs遷移到骨形成表面發(fā)生成骨分化,有助于體內(nèi)骨形成。與年輕BMSCs相比,老年BMSCs的體外遷移能力明顯受損,Macf1***下調(diào),從Macf1基因位點轉(zhuǎn)錄而來的長鏈非編碼RNA PMIF(即lnc-PMIF)表達(dá)***增高。上述提示,衰老過程中小鼠骨形成的減少伴隨著OPCs向骨形成表面遷移的減少和OPCs中l(wèi)nc-PMIF表達(dá)的升高。英拜潤色的標(biāo)書的中標(biāo)率**提高。
數(shù)據(jù)庫還可以分析現(xiàn)有的化學(xué)品和基因相關(guān)數(shù)據(jù),根據(jù)自身需要檢索相關(guān)基因或者化學(xué)品。
該數(shù)據(jù)庫還將解剖學(xué)及其相關(guān)表型與環(huán)境化學(xué)物質(zhì)聯(lián)系起來,使它們可計算用于薈萃分析,并使 CTD 中化學(xué)和表型景觀的解剖學(xué)視角成為可能。2020 年, CTD 利用醫(yī)學(xué)主題詞中“解剖學(xué)”分支的修改子集作為其受控詞匯源,其中包括 1799 個用于解剖結(jié)構(gòu)和區(qū)域、生理系統(tǒng)、流體和組織、細(xì)胞和亞細(xì)胞成分的術(shù)語。 目前,CTD中超過247000種化學(xué)-表型相互作用使用了870個解剖學(xué)術(shù)語。 用戶可以通過選擇門戶圖標(biāo)向下鉆取可導(dǎo)航層次結(jié)構(gòu)或使用 CTD 關(guān)鍵字搜索框中的“解剖”選擇列表選項,從主頁訪問 CTD Anatomy。CTD Anatomy 頁面組織和合并數(shù)據(jù),允許用戶從解剖學(xué)角度探索交互;這可用于識別不同生理系統(tǒng)(例如腎臟、肝臟、大腦和心血管系統(tǒng))獨有或共享的化學(xué)物質(zhì)和表型,或發(fā)現(xiàn)例如影響影響的 1158 種化學(xué)物質(zhì) 心臟中有 600 種表型。同樣,已經(jīng)開始將 CTD 暴露與 CTD 解剖學(xué)相結(jié)合,使環(huán)境健康科學(xué)家能夠調(diào)查暴露研究和組織和系統(tǒng)暴露化學(xué)應(yīng)激誘導(dǎo)表型的細(xì)節(jié)。***,為了幫助提高數(shù)據(jù)庫的互操作性。 大黃酸處理沒有改變?nèi)樗峋蛩岬漠a(chǎn)生。糖尿病科研分子生物學(xué)實驗
英拜提供生命科學(xué)內(nèi)的一體化服務(wù)。Notch信號靶標(biāo)科研地區(qū)科學(xué)基金
結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-337-3p和miR-137抑制了HMGA2、TGF-bII、p-Smad3和Snail的表達(dá)(圖6E和6F)。agomir-3373p/137處理和sh-MIR210HG-或sh- HMGA2處理Ishikawa和HEC-1A細(xì)胞中,b-catenin在細(xì)胞核中的分布減少,E-cadherin的表達(dá)增加。然后,我們研究了MIR210HG是否通過改變miR-337-3p/137-HMGA2軸來影響EMT進(jìn)展。Western blotting和免疫熒光結(jié)果顯示,MIR210HG的下調(diào)降低了Ishikawa和HEC1A細(xì)胞中HMGA2蛋白的表達(dá),而加入miR-337-3p/137抑制劑后,對HMGA2、b-catenin和E-cadherin表達(dá)的抑制作用被逆轉(zhuǎn)(圖6G和6H)。
MIR210HG通過miR-337-3p和miR-137促進(jìn)**進(jìn)展
為了確定MIR210HG下調(diào)對Ishikawa和HEC-1A細(xì)胞系惡性行為的抑制作用是否通過miR-337-3p/137介導(dǎo),我們進(jìn)行了功能挽救實驗。結(jié)果證實MIR210HG沉默對Ishikawa和HEC-1A細(xì)胞遷移和侵襲的惡性抑制作用被miR-337-3p/137敲低***逆轉(zhuǎn)(圖7A-7E)。這表明MIR210HG通過miR-337-3p/137調(diào)控Ishikawa和HEC-1A細(xì)胞的惡性生物學(xué)行為。 Notch信號靶標(biāo)科研地區(qū)科學(xué)基金
公司特色是以各式高通量二代測序為基礎(chǔ),利用生物數(shù)據(jù)信息分析手段,通過英拜生物自有的分子、病理以及細(xì)胞實驗平臺,提供課題整體設(shè)計外包、撰寫SCI論文一站式服務(wù)。公司實驗平臺落座在漕河涇開發(fā)區(qū)浦江園區(qū),實驗平臺開放參觀,客戶可隨時參觀實驗并參與實驗課題的進(jìn)度,保證您的實驗是在您的指導(dǎo)下完成。
1.整體課題外包服務(wù):RNA甲基化研究專題,外泌體研究專題,wnt/VEGF/toll等經(jīng)典通路研究,設(shè)計的課題均具有后續(xù)實驗課題的延展性,為您的標(biāo)書奠定較好的基礎(chǔ)
2.標(biāo)書申請:提供標(biāo)書課題設(shè)計、撰寫,標(biāo)書部分基礎(chǔ)實驗的開展,設(shè)計的標(biāo)書均符合科研前沿?zé)狳c,中標(biāo)率很高。
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4.二代測序:轉(zhuǎn)錄組測序、smallRNA測序、snoRNA測序、TRF測序
5.芯片:信號通路pcr芯片蛋白芯片
6.表觀遺傳實驗:DNA甲基化實驗(BSP,MSP,焦磷酸測序),RNA甲基化實驗
7.實時定量PCR(mRNA,LncRNA,microRNA,circRNA),WB,RNA功能驗證實驗(靶基因驗證,過表達(dá),干擾),基因突變及SNP檢測,F(xiàn)ISH,RNA-PULLdown,rip,chip實驗以及細(xì)胞增殖,凋亡,流式等細(xì)胞功能學(xué)實驗